JBCS

INTRODUÇÃO

Os micro-organismos produzem uma imensurável diversidade de metabólitos raros que desempenham um papel importante em sua autogenia (independente de forças ou agentes externos), como autodefesa, agressão e principalmente comunicação intra- e intercomunidades. Muitos destes compostos, coincidentemente, apresentam valiosa atividade biológica para a humanidade.¹ Os metabólitos secundários, como são chamados, não são necessariamente produzidos em qualquer condição e, na grande maioria dos casos, a função destes compostos e seus benefícios para o organismo não são ainda conhecidos.²

Streptomyces e outras actinobactérias relacionadas encontram-se entre as fontes mais produtivas de metabólitos secundários, com uma série de atividades biológicas e aplicações.³ Estima-se que cerca de metade dos antibióticos produzidos industrialmente, além de vários compostos comercializados como agentes imunossupressores, quimioterápicos, herbicidas e vermífugos, entre outros compostos farmacologicamente ativos, sejam produzidos por esses organismos.⁴

Dentre os metabólitos secundários produzidos por Streptomyces, os policetídios e peptídeos não-ribossomais constituem uma das classes mais importantes e podem ocorrer esporadicamente em determinadas condições de cultivo em laboratório. Muitos destes compostos são produzidos apenas em condições específicas, em contraste com os metabólitos ditos primários, responsáveis pela estrutura e energia de todas as células vivas.⁵ As cadeias que formam a estrutura principal dos policetídeos são sintetizadas via um caminho interativo por um grupo de enzimas conhecidas como policetídeo sintases (PKSs). De forma similar os peptídeos não ribossomais são biossintetizados pelas peptídeo não-ribossomais sintetases (NRPSs).⁶

As policetídeo sintases (PKSs) do tipo I são enzimas multifuncionais organizadas em módulos, também conhecidas como policetídeo modulares, sendo que cada módulo abriga um conjunto completo de domínios enzimáticos independentes, responsáveis por cada ciclo de alongamento e modificação da cadeia policetídica. Entre os exemplos mais comuns encontram-se as 6-deoxieritronolídeo B sintases, DEBS 1, 2 e 3, responsáveis pela produção do 6-deoxieritronolídeo B (após formação da aglicona - 6DEB, outras enzimas pós-modificadoras como hidroxilases e glicosidases promovem a formação da eritromicina), além de outros complexos multienzimáticos responsáveis pela biossíntese de outros policetídeos reduzidos (macrolídeos, poliéteres e polienos).⁷

Analogamente, a síntese de peptídeos não ribossomais é mediada por enzimas conhecidas como peptídeo não ribossomal sintetases e requer ao menos o envolvimento de três domínios enzimáticos. O domínio de adenilação (A) seleciona o aminoácido cognato e o ativa como aminoacila adenilato. O aminoácido ativado é então transferido para uma proteína carreadora de peptidila (PCP) que o transfere ao domínio de condensação (C) que, finalmente, catalisa a formação da ligação peptídica.⁸

Uma alternativa para facilitar a busca por grupamentos de genes que codificam um produto policetídico ou polipeptídico envolve a triagem dos módulos enzimáticos em "bibliotecas" do DNA genômico utilizando experimentos de PCR.⁹ Como existem regiões altamente conservadas nos domínios das cetossintase (KS), acila-transferases (AT) em PKs e de adenilação (A) em NRPs, é possível desenhar primers (oligonucleotídeos) que possam, em condições adequadas, amplificar boa parte dos trechos correspondentes a estes domínios enzimáticos curtos e desta forma prever se um determinado organismo apresenta potencial para a produção de policetídeos e peptídeos não-ribossomais, entre outros metabólitos.¹⁰

Acoplada a ferramentas de bioinformática, a prospecção de genes (genome mining) tem sido utilizada para a descoberta de inúmeras moléculas bioativas. O conhecimento das sequências de nucleotídeos dos clusters de genes ou até mesmo de todo o genoma do micro-organismo permite que novas abordagens sejam adotadas para a química de produtos naturais, uma vez que a previsão da estrutura do metabólito pode facilitar a sua obtenção.¹¹ Utilizando-se uma metodologia de prospecção de genes, é possível promover uma reconstrução baseada na escala evolutiva para comparar genes biossintéticos, direcionando a busca por uma entidade química. Esta abordagem direcionou a descoberta de um análogo de pimaricina, JBIR-13 (1), produzido por Streptomyces bicolor a partir da análise filogenética de fragmentos de genes de PKS depositados no NCBI, demonstrando que é possível descobrir novas estruturas a partir desta metodologia.¹² Outros metabólitos como a orfamida (2),¹³ salinisporamida (3),¹⁴ e coeliquelina (4)¹⁵ também foram descobertos utilizando-se metodologias de prospecção de genes biossintéticos (Figura 1).

Figura 1. Estruturas do JBIR-13, análogo de pimaricina, salinisporamida, orfamida e coeliquelina, elucidados por metodologias de prospecção de genes biossintéticos (genome mining)

Nesse trabalho descrevemos a aplicação de provas metabólicas para avaliar o potencial para a produção de metabólitos do tipo policetídeos e peptídeos não-ribossomais em linhagens de actinobactérias endofíticas, isoladas de Citrus reticulata.¹⁶ A triagem utilizando provas metabólicas permite gerar um fingerprint molecular bastante efetivo para promover desreplicação metabólica. Adicionalmente, a atividade antibiótica promovida pelas actinobactérias foi avaliada como ferramenta para seleção das linhagens mais promissoras para estudos futuros.

PARTE EXPERIMENTAL

Linhagens de micro-organismos

Foram avaliadas 13 linhagens de actinobactérias endofíticas isoladas da raiz de Citrus reticulata (A1 (Streptomyces sp), (A3, não identificada), A4 (não identificada), A9 (Nocardia dassonvilei), A13 (Streptomyces sp), A14 (Nocardia nova), A19 (S. bicolor), A30 (S. cyaneus), A23 (S. wadayamensis), B1 (Streptomyces sp), A21 (S. cyaneus), A10 (Streptomyces sp), A18 (Streptomyces sp). O isolamento e identificação (por análise do fragmento 16S) foi realizado pelo Prof. Dr. Wellington Araújo, Prof. Dr. João Lúcio de Azevedo e Msc. Joelma Marcon, da Universidade de São Paulo.¹⁶ Streptomyces coelicolor ATCC 10147 possui o genoma sequenciado e anotado e foi utilizado neste estudo como micro-organismo modelo. As linhagens Streptomyces fradiae NCIMB 11002 e S. rimosus ATCC 14827 foram cedidas pela Fiocruz. As linhagens de micro-organismos patogênicos Candida albicans CCT 0776, Enterococcus faecallis CCT 1494, Salmonella typhimurium CCT 1478, Staphylococcus aureus CCT1485, Escherichia coli CCT1457, Bacillus megaterium CCT 2478 e Pseudomonas aeruginosa CCT 1476 foram adquiridas da Coleção de Culturas Tropical, da Fundação André Tosello (Campinas, São Paulo).

Extração do DNA genômico das actinobactérias

O DNA genômico das actinobacérias foi isolado de acordo com o protocolo de Sharma e Singh.¹⁷ As linhagens foram inoculadas em 2 mL de meio LB e deixadas em agitador orbital a 30 ºC, 300 rpm por toda a noite. As células crescidas foram centrifugadas a 5000 rpm, a 25 ºC, por 5 minutos. Os pellets foram ressuspensos em 200 µL de solução tampão Tris-EDTA (10 mM Tris-HCl pH 8,0, 1 mM EDTA pH 8,0, 50 ng de RNase). Foram adicionados 400 µL de solução I (1% p/v sarcosil, 0,5 M de cloreto de sódio, 1% p/v SDS) e as suspensões resultantes foram misturadas por inversão. Os tubos foram mantidos por 10 minutos a 37 ºC com agitação por inversão nos intervalos de 5 e 10 minutos. Adicionou-se igual volume de PCI (fenol:clorofórmio:álcool isoamílico 25:24:1). A mistura foi feita por inversão e posteriormente centrifugou-se as células a 10000 rpm (em centrífuga de bancada) por 5 minutos a 25 ºC. O sobrenadante foi transferido para um novo tubo e adicionou-se 10% em volume de acetato de sódio (3 M pH 5,2) e 60% em volume de isopropanol. Misturou-se por inversão 6 vezes e a solução resultante contendo o DNA precipitado foi centrifugada por 5 minutos a 10000 rpm a 25 ºC. O pellet (DNA preciptado) foi lavado com 1 mL de etanol 70% e centrifugado a 10000 rpm por 3 minutos. Após evaporação do solvente, adicionou-se 100 µL de água milliQ estéril.

Ensaios de triagem de módulos e domínios enzimáticos utilizando PCR (Reação em Cadeia da Polimerase)

As reações de amplificação dos módulos enzimáticos foram realizadas em condições adequadas seguindo o protocolo sugerido por Ayuso et al,¹⁰ utilizando o DNA genômico como molde e Phusion polimerase (High Fidelity). Os primers degenerados A3F (5'-GCSTACSYSATSTACACSTCSGG-3') e A7R (5'-SASGTCVCCSGTSCGGTAS-3') foram utilizados para amplificar 700 pb dos domínios de adenilação. Para amplificação dos domínios de cetossintase-metilmalonila-CoA-transferase (1200 pb) utilizou-se o par de primers K1R (5'-TSAAGTCSAACATCGGBCA-3') e M6R (5'CGCAGGTTSCSGTACCAGTA-3'). KS-BEF (5'-CCGCGCGAGGCGCTGGCCGTCGAC-3') e KS-BER (5'-CCGCGCCGGGCGGGGGTCTCGTCGTTCGGCATCAGCGGCACCAACGCG-3') foram utilizados para detectar domínios KS em geral em sistemas PKS-I. As reações foram realizadas na presença das proporções adequadas de DNA (1, 2 e 5 µL de uma solução com concentração inicial de 10 µg µL^-1), primers, dNTPs, polimerase e DMSO (volume final de reação de 20 µL). Os produtos das amplificações foram analisados por eletroforese em gel de agarose (1%) utilizando Syber Safe (Invitrogen) como intercalante de DNA.

Clonagem e seleção dos clones

Os produtos do PCR foram subclonados utilizando o vetor apropriado para cada caso: para fragmentos que possuem extremidade abrupta, gerada pela Phusion DNA polimerase, foi utilizado pCR-blunt do kit Zero Blunt (Invitrogen), o qual possui marcador de resistência a canamicina ou pUC19 que possui marcador de resistência a ampicilina; para fragmentos com extremidades coesivas geradas pela Pfx ou Taq DNA polimerase foi utilizado o vetor pGEMT-Easy que possui marcador de resistência a ampicilina. A reação de ligação foi mediada por T4 DNA ligase utilizando proporções inserto:vetor que variaram de 3:1 a 10:1 (16 ºC, 18 horas). As ligações foram transformadas em células DH5α quimicamente ou eletro-competentes em placas de meio LB sólido contendo os antibióticos adequados na concentração de 50 µg mL^-1. PCR de colônia foi utilizado para verificar a presença de inserto em cerca de 20 clones por reação de transformação. Os clones positivos foram purificados por minipreparação e encaminhados para sequenciamento. Outros protocolos padrão de biologia molecular foram realizados conforme descrito por Sambrook and Russel.¹⁸

Ensaios de inibição vertical para avaliação da atividade antibiótica¹⁹

A avaliação da atividade antibiótica foi realizada por teste de inibição em placa.¹⁹ Os meios de cultivo propícios para a difusão Anti I e Anti II foram preparados de acordo com o protocolo da Difco. Inicialmente fez-se uma estria em posição vertical de cada uma das actinobactérias testadas e encubaram-se as placas em estufa microbiolóloca 30 ºC por 7 dias. Posteriormente, as linhagens patogênicas Salmonella typhimurium CCT 1478, Escherichia coli CCT1457, Bacillus megaterium CCT0776, Staphylococcus aureus CCT1485 e Candida albicans CCT 0776 foram inoculadas em posição perpendicular a actinobactéria. As placas foram retornadas para estufa por 18 horas. Foram anotadas as inibições e os valores foram expressos em porcentagem de inibição. Os testes foram realizados em triplicata.

Sequenciamento e alinhamento

O sequenciamento das subunidades amplificadas nos experimentos de PCR foi realizado pela empresa Helixxa (Campinas, SP). Uma vez adquiridas as sequências, os eletroferogramas foram visualizados utilizando o programa Bioedit para obter a sequência de nucleotídeos removendo-se os nucleotídeos correspondentes ao vetor de clonagem. Estas sequências foram alinhadas com as existentes no banco de dados do NCBI (NCBI - National Center for Biotechnology Information - http://www.ncbi.nlm.nih.gov/), utilizando a ferramenta blastn (BLAST - Basic Local Alignment Search Tool - http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/). Para construção da árvore filogenética, a sequência de nucleotídeos de cada clone foi traduzida em aminoácidos utilizando o programa Expasy que contém a ferramenta translate. Depois de geradas as 6 sequências possíveis (frames), foi realizado o alinhamento destas sequências novamente utilizando o banco de dados do NCBI com a ferramenta blastp.

As sequências do banco de dados foram ajustadas no programa Bioedit. O alinhamento foi realizado utilizando o programa ClustalW. Para a construção da árvore filogenética utilizou-se o método Neighbor Joining. A visualização da árvore foi feita pelo programa Treeview. As análises das sequências foram realizadas também por meio do programa Geneious.²⁰

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Desreplicação metabólica por PCR

A análise recente do genoma de diversas linhagens de Streptomyces e outras actinobactérias revelou uma grande abundância de clusters de genes que codificam enzimas do metabolismo secundário. Após análises das informações dos genomas de S. coelicolor,²¹ S. avermitilis²² e Saccharopolyspora erythraea,²³ as primeiras linhagens de actinobacterias a serem sequenciadas, pode-se prever a existência de um grande número de etapas metabólicas esperando para serem descobertas, uma vez que a capacidade para a produção de metabólitos nem sempre é acessada sob as condições de cultivo em laboratório.²⁴

Novas metodologias baseadas na aplicação de ferramentas genômicas para direcionar a busca por metabólitos desconhecidos podem ser encontradas na literatura.¹¹ Uma alternativa para facilitar a busca por grupamentos de genes que codificam para os produtos policetídicos (PKs) e peptídeos não-ribossomais (NRPs) envolve a triagem dos módulos enzimáticos, os quais correspondem a sequências curtas de nucleotídeos, no DNA genômico utilizando experimentos de PCR.⁹ Essa aproximação consiste em um fingerprint molecular, baseado na avaliação do potencial metabólico das linhagens estudadas em produzir metabólitos secundários, e que pode ser efetivo para facilitar o processo de desreplicação. O estudo permite focar os esforços de triagem por compostos bioativos nos micro-organismos mais promissores, fator essencial para direcionar a triagem para a descoberta de alvos terapêuticos.

O estudo do potencial biossintético das actinobactérias isoladas de Citrus foi realizado adotando-se o uso de provas metabólicas (primers) que se basearam nas regiões conservadas KS (em PKSs) e A (em NRPSs). A construção dos oligonucleotídeos para amplificar regiões dos genes pks e nrps assim como as condições de PCR foram baseadas no estudo de Ayuso et al.¹⁰

Foram estudadas 13 linhagens de actinobactérias isoladas de Citrus reticulata além de Streptomyces coelicolor, S. rimosus e S. fradiae. A metodologia permitiu identificar a presença de genes pks e nrps relacionados à biossíntese de PKs e NRPs no genoma das actinobactérias em altas frequências: 87% PKS e 92% NRPS (Tabela 1). Um experimento do tipo "multiplex" também foi realizado com o objetivo de amplificar as duas sequencias simultaneamente, facilitando o processo de triagem (Figura 2).²⁵ Foram utilizadas três diferentes concentrações de DNA: 0,5, 1,0 e 2,5 µg µL^-1, uma vez que a concentração de molécula molde pode influenciar o resultado da reação de amplificação. Os pares de primers degenerados A3F e A7R têm como alvo domínios de adenilação (A), amplificando uma região de cerca de 700 pb, enquanto K1R e M6R permitem a amplificação de uma região correspondente a 1200 a 1400 pb dos domínios de cetossintase-metilmalonila transferase (KS-AT). Os primers KS-BEF e KS-BER amplificam fragmentos entre 500-600 pb (Material Suplementar, Figuras 1S, 2S e 3S).

Figura 2. Fotodocumentação em gel de agarose (1,5%) da amplificação das regiões de 700 pb e 1200 pb correspondentes aos domínios A e KS-AT, respectivamente, em um experimento de PCR multiplex. É possível observar que ambas as regiões são amplificadas com alta frequência (a ordem dos organismos avaliados está descrita na Tabela 1S)

Avaliação qualitativa da atividade antibiótica

Para ajudar a reduzir o universo de micro-organismos a serem estudados, uma vez que a triagem utilizando provas metabólicas revelou a presença de regiões associadas à PKS e NRPS na maioria das linhagens, foram acoplados testes de atividade biológica. As linhagens foram avaliadas com relação à atividade antibiótica por meio de testes de inibição em placa de agar.¹⁹ O teste utiliza um meio de cultivo apropriado para a difusão dos metabólitos exudados. Dentre as 13 cepas testadas, pode-se observar pelo teste de inibição que B1, A19, A23 e A30 apresentaram maior capacidade em promover a inibição do crescimento dos micro-organismos patogênicos. A linhagem padrão utilizada para comparação foi Streptomyces rimosus ATCC14827, conhecida por produzir oxitetraciclinas e tetraciclina.²⁶ Nesse ensaio S. rimosus promoveu inibição elevada dos organismos S. typhmurium, E. coli e B. megaterium. Sabe-se que algumas cepas de S. rimosus produzem o polieno antifúngico rimocidina, entretanto não observou-se efeito sobre o crescimento de C. albicans. As linhagens A9 e A18 promoveram a inibição do crescimento dos patógenos testados apenas em pequena extensão.²⁷ Já as actinobactérias B1, A19, A23 e A30 promoveram inibição do crescimento da levedura C. albicans, sendo que B1 em maior extensão (61%). A19, A23 e B1 foram também ativas na inibição de Bacillus, enquanto a linhagem B1 promoveu a inibição de Staphylococcus aureus (Tabela 2).

Análise dos clusters de PKS e NRPS para as linhagens B1, A19, A23 e A30

Guiados por informações de testes biológicos, as linhagens denominadas A19, A23, A30 e B1 foram selecionadas para análise de clusters. Os fragmentos gerados por PCR foram subclonados em pCRblunt e transformados em E. coli DH5α. Alguns clones da biblioteca foram selecionados por PCR de colônia e após minipreparação os plasmídeos foram encaminhados para sequenciamento.

A análise de cluster pode ser utilizada para desreplicação metabólica uma vez que as informações da sequência são comparadas àquelas depositadas em banco de dados (NCBI). Para todas as sequencias de nucleotídeos obtidas foram feitas buscas em banco de dados utilizando-se as ferramentas blastn e blastx, as quais permitem avaliar a similaridade das sequências de nucleotídeos com relação a outras sequências de nucleotídeos e também com relação a uma base de sequências não redundantes de proteínas. Foram considerados apenas os hits gerados contendo 60-99% de identidade com relação às sequencias depositadas em banco de dados, valores de cobertura do alinhamento acima de 50% e e-values maiores que 1 × 10^-8.

Análises de PKS

A partir dos resultados de sequenciamento dos fragmentos clonados correspondentes aos domínios de KS-AT inicialmente, verificou-se a presença de resíduos conservados de cetossintase-metilmalonila transferase, uma vez que os primers utilizados amplificam a regiões KS-AT relacionadas a incorporação de subunidades de propanoato. Os resíduos conservados correspondem a RVDVVXXXXXXXMXSXAxhW (sendo que x representa Arg, Ser, Ala ou Glu e h um grupo hidrofóbico) e GHSQG (Figura 3).²⁸ Todas as sequências para PKS foram também analisadas no PKSDB e apresentaram correta organização de domínios (KS-AT). Os clones considerados para as análises posteriores foram E2 de Streptomyces bicolor A19; B11, B12 e B43 de Streptomyces wadayamensis A23; C12 de Streptomyces cyaneus A30; e D15 de Streptomyces sp B1.

Figura 3. Resíduos conservados de KS-AT que incorporam propanoato. Alinhamento gerado no programa Geneious¹⁹

Os resultados dos alinhamentos e possíveis metabólitos associados às sequências amplificadas relacionadas aos domínios KS-AT estão compilados na Tabela 3. As sequências amplificadas de Streptomyces sp B1 conduziram a similaridade a outras genéricas depositadas como PKSs do tipo I, não associadas a metabólitos específicos. Já para o micro-organismo A23, as sequências de nucleotídeos de 3 fragmentos apresentaram alta similaridade com o gene fscD de Streptomyces FR-008, pertencente ao cluster de genes responsável pela biossíntese de um polieno análogo a candicidina. Outros genes homólogos são nysA, amphA, pimS1 e canP2,²⁹ que estão envolvidos na biossíntese de nistatina, anfotericina, pimaricina e candicidina. Outras sequências avaliadas de A23 não estavam associadas a metabólitos discriminados. Observaram-se também altas similaridades a sequências de domínios de KS envolvidas na biossíntese de polienos para clones dos micro-organismos A19 e A30.

A partir do alinhamento gerado em comparação ao NCBI, as sequências com baixos parâmetros e-value envolvidas na biossíntese de metabólitos conhecidos foram utilizadas para construir a árvore de taxonomia metabólica para cada um dos organismos (MS, Figuras S5, S6 e S7). O método utilizado para estabelecer uma relação de filogenia foi o Neighbor Joining.

Para Streptomyces bicolor A19 pode-se observar a localização das sequências referentes a dois dos fragmentos amplificados no mesmo clado das proteínas FscB e FscD, participantes na biossíntese da candicidina. Já para um fragmento representativo de Streptomyces cyaneus A30 observa-se o clone C12 no mesmo clado da proteína BafII de Streptomyces lohhi, produtora da bafilomicina. Os clones de S. wadayamensis A23 situaram-se nos mesmos clados que as proteínas FscB e FscD. Esses resultados permitem observar que a maior quantidade de sequências obtidas a partir do alinhamento utilizando as ferramentas blastn e blastp, para as linhagens A19 e A23 está relacionada a biossíntese de policetídeos poliênicos, sugerindo a possibilidade desses micro-organismos apresentarem em seu genoma um cluster de genes semelhante e, portanto, ter o potencial para produção desta classe química de metabólitos. O mesmo raciocínio se aplica para A30, um possível produtor de bafilomicina ou molécula estruturalmente análoga.

Análises de NRPS

Para os domínios de adenilação em NRPSs são conhecidas 10 regiões conservadas que permitem verificar sua correta organização: A1 (L(TS)YxEL); A2 (LKAGXAY(VL)P(LI)D); A3 (LAYxxYTSG(ST)TGxPKG); A4 (FDxS); A5 (NxYGPTE); A6 (GELxLxGxG(VL)ARGYL); A7 (Y(RK)TGDL); A8 (GRxDxQVKIRGxRIELGEIE); A9 (LPxYM(IV)P) e A10 (NGK(VL)DR).³⁰ Em função da qualidade das sequências geradas, os domínios de adenilação foram avaliados somente para os micro-organismos Streptomyces sp B1 e S. wadayamensis A23, além do organismo modelo Streptomyces coelicolor ATCC 10147. Observou-se que os domínios de adenilação amplificados pelos primers A3F e A7R (700 pb) contêm as sequências conservadas denominadas por A3, A4, A5, A6 e A7 (Figura 4).

Figura 4. Resíduos conservados de adenilação. Alinhamento gerado no programa Geneious²⁰

Os resultados dos alinhamentos comparativos utilizando-se as ferramentas blastn e blastp e possíveis metabólitos associados às sequências amplificadas relacionadas aos domínios de adenilação estão compilados na Tabela 4. Pode-se observar pelos resultados apresentados que as sequencias amplificadas de Streptomyces wadayamensis A23 apresentam elevada similaridade a gramicidina, actinomicina e manopeptimicina,³¹ enquanto Streptomyces sp B1 possui um cluster de genes relacionado à produção do pigmento azul indigoidina.³² De maneira bastante interessante, ao cultivarmos o microrganismo B1 em condições específicas, em meio contendo farinha de soja e manitol (SFM), observamos a produção de uma coloração azul, certamente relacionada à biossíntese de indigoidina.

Similarmente, o alinhamento das sequências com baixos parâmetros e-value em comparação ao NCBI foi utilizado para construir a árvore de taxonomia metabólica para cada um dos organismos (MS, Figuras 8S e 9S).

A sequência de nucleotídeos correspondente à indigoidina foi traduzida e alinhada com proteínas do banco de dados do NCBI. Observou-se que esta possui uma identidade de 97% com a sintetase de Streptomyces albus (Tabela 4), que também está envolvida na biossíntese do metabólito indigoidina.³² Foi possível observar também, em menor grau, similaridade com sequências de micro-organismos de outros gêneros tais como Renibacterium salmoninarum, Rhodobacterales, Vogesella indigofera e Erwinia chrysanthemi, que também estão envolvidas com a biossíntese da indigoidina (IndC-like protein - Figura 4S).

Já as sequências de nucleotídeos relacionadas aos domínios de adenilação presentes nos clones provenientes de A23 (A19/A1/A13/A239/A29) foram traduzidas e o alinhamento dos aminoácidos mostrou uma cobertura de 100% com a proteína LgrC de Streptomyces albus J1074. Na árvore de taxonomia metabólica essas sequências aparecem no mesmo clado que a proteína LgrC de 3388 aminoácidos envolvida na biossíntese da gramicidina, (representada pela cor azul na árvore, MS, Figura 9S), um pentadecapeptídeo que contém aminoácidos D e L em sua estrutura (HCO-L-Val-Gly-L-Ala-D-Leu-L-Ala-D-Val-L-Val-D-Val-L-Trp-D-Leu-L-Trp-D-Leu-L-Trp-D-Leu-L-Trp-NHCH₂CH₂OH) biossintetizado por algumas linhagens de Streptomyces e também encontrado em culturas de Bacillus brevis.³³

Utilizando a Ferramenta NRPS predictor2 (www.nrps.informatik.uni-tuebingen.de),³⁴ fez-se uma análise dos domínios de adenilação amplificados relacionados a produção de gramicidina em A23 e indigoidina em B1. Pode-se observar que estes domínios apresentam os aminoácidos conservados em regiões específicas e são responsáveis pela incorporação de D-valina e glutamina, respectivamente (Tabela 5).

Considerações sobre o método de desreplicação metabólica utilizando primers degenerados

Como os primers utilizados são degenerados e permitem o anelamento em diversas regiões do genoma, esperava-se obter amplificações de diferentes localidades associadas aos domínios de adenilação no caso de NRPS ou cetossintase-metilmalonila transferase no caso de PKS. Ao contrário, o sequenciamento mostrou que a maior parte das sequências de nucleotídeos amplificados era idêntica (Figura 10S). Esta é uma falha associada a metodologia de triagem que revela uma tendência a amplificação de determinadas sequências em detrimento de outras, o que mostra que o método não é abrangente para revelar o verdadeiro potencial bosssintético dos micro-organismos avaliados. Portanto, estudos de produção de metabólitos a partir de seu cultivo em meios de produção com fontes diversificadas de nutrientes continuam sendo necessários. Uma alternativa aos cultivos envolve o sequenciamento completo do genoma das linhagens eleitas como promissoras, o que permite a avaliação do potencial global para a produção de metabólitos secundários a partir da anotação dos genes, possibilitando ainda direcionar os estudos na busca por metabólitos não produzidos nas condições de cultivo e a obtenção de compostos possíveis candidatos a fármacos com mais agilidade.³⁵

CONCLUSÃO

Neste trabalho descrevemos o emprego de provas metabólicas como metodologia de triagem para avaliar o potencial para a produção de policetídeos e peptídeos não-ribossomais em actinobactérias isoladas de Citrus reticulata. A metodologia agrega ferramentas de biologia molecular e taxonomia metabólica tendo como objetivo facilitar a identificação de linhagens promissoras em um grupo de micro-organismos.

Os dados apresentados evidenciam que actinobactérias endofíticas de Citrus reticulata apresentam significante potencial para a produção de compostos bioativos da classe dos policetídeos e peptídeos não-ribossomais. Os altos níveis de detecção de genes relacionados a biossíntese de PKS-I, PKS-II e NRPS confirmam a ampla distribuição dessas sequências neste filo.

A partir da análise de clusters foi possível classificar as sequências representativas como participantes da biossíntese de alguns grupos específicos de metabólitos (p. ex. polieno).

A ocorrência de sequências de PKSs e NRPSs não associadas a metabólitos identificados sugere a capacidade das linhagens em produzir metabólitos cujos grupamentos de genes participantes das vias metabólicas ainda não são conhecidos ou ainda não encontram-se incorporados a base de dados. O uso de provas metabólicas como ferramenta de triagem apresenta-se, portanto, como uma alternativa a ser acoplada às triagens convencionais na busca por novos produtos naturais e como metodologia para desreplicação.

Percebe-se que a análise por PCR tem a limitação de subestimar a diversidade e detectar etapas irrelevantes. Ainda assim, os dados obtidos demonstram que o potencial metabólico das linhagens merece ser estudado, uma vez que actinobactérias carregam um arsenal biossintético único que continua a direcionar a busca por novas substâncias bioativas para diversas aplicações. Os resultados também evidenciam que as triagens convencionais aplicadas ao acesso da diversidade microbiana possuem limitações. Nesses casos, abordagens complementares podem ser utilizadas para direcionar as pesquisas voltadas para os produtos naturais microbianos.

MATERIAL SUPLEMENTAR

Algumas imagens dos sistemas utilizados neste trabalho estão disponíveis em http://quimicanova.sbq.org.br, na forma de arquivo PDF, com acesso livre.

AGRADECIMENTOS

Os autores agradecem a Fapesp (Processos No. 2008/00605-1 - Jovem Pesquisador), 2008/06097-8 (L. R. Giarola), 2009/03793-6 (P. L. R. Cruz), 2010/16798-3 (S. S. Moraes), CNPQ (Bolsa PQ 306932/2009-1), Faepex- UNICAMP (Convênio: 519.292, Solicitações 596/2008 e 788/2009), IFS (Grant Support No. F/4735-1) e Para Mulheres na Ciência (Edição 2008, L. G. De Oliveira).

REFERÊNCIAS

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2. Dewick, P. M.; Medical Natural Products, 3rd ed., John Wiley & Sons, Ltd: UK, 2009.

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4. Kieser, T.; Bibb, M. J.; Buttner, M. J.; Chater, K. F.; Hopwood, D. A.; Practical Streptomyces Genetics; The John Innes Foundation: Norwich, 2000; Hopwood, D. A.; Streptomyces in Nature and Medicine: The Antibiotics Makers, Oxford University Press: New York, 2007.

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19. http://inst.bact.wisc.edu/inst/index.php?module=book&type=user&func=displayarticle&aid=93, acessada em 28/01/2015; Waksman, S. A.; The Actinomycetes: their nature, occurrence and importance, Chronica Botanica Company, Waltham, Mass., USA, 1950 (http://www.biodiversitylibrary.org/item/31000#page/53/mode/1up, acessada em 28/01/2015); apesar de ser atribuído um valor de porcentagem de inibiçao, o teste de avaliaçao de atividade antibiótica permite uma avaliaçao apenas qualitativa.

20. Geneious version 6.1.6 created by Biomatters. Disponível em http://www.geneious.com/

21. Bentley, S. D.; Chater, K. F.; Cerdeño-Tárraga, A.-M. ; Challis, G. L.; Thomson, N. R.; James, K. D.; Harris, D. E.; Quail, M. A.; Kieser, H.; Harper, D.; Bateman, A.; Brown, S.; Chandra, G.; Chen, C. W.; Collins, M.; Cronin, A.; Fraser, A.; Goble, A.; Hidalgo, J.; Hornsby, T.; Howarth, S.; Huang, C.-H.; Kieser, T.; Larke, L.; Murphy, L.; Oliver, K.; O'Neil, S.; Rabbinowitsch, E.; Rajandream, M.-A.; Rutherford, K., Rutter, S.; Seeger, K.; Saunders, D.; Sharp, S.; Squares, R.; Squares, S.; Taylor, K.; Warren, T.; Wietzorrek, A.; Woodward, T.; Barrell, B. G.; Parkhill, J.; Hopwood, D. A.; Nature 2002, 417, 141. DOI: http://dx.doi.org/10.1038/417141a PMID: 12000953

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26. Petkovic, H.; Cullum, J.; Hranueli, D.; Hunter, I. S.; Peric-Concha, N.; Pigac, J.; Thamchaipenet, A.; Vujaklija, D.; Long, P. L.; Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2006, 70, 704. DOI: http://dx.doi.org/10.1128/MMBR.00004-06 PMID: 16959966

27. Observou-se que as linhagens patogênicas nao chegam a tocar a estria de crescimento da actinobactéria, e, portanto a inibiçao ocorre em pequena extensao, enquanto para 0% de atividade as linhagens se encontram na placa (ver ref. 19).

28. Haydock, S. F.; Aparicio, J. F.; Molnár, I.; Schwecke, T.; Khaw, L. E.; König, A.; Marsden, A. F. A.; Galloway, I. S.; Staunton, J.; Leadlay, P. F.; FEBS Lett. 1995, 374, 246. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/0014-5793(95)01119-Y PMID: 7589545

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31. A análise da anotaçao do genoma de Streptomyces wadayamensis A23 permitiu confirmar a presença do grupamento de genes que codifica para a biossíntese da manopeptimicina.

32. Pela análise da anotaçao do genoma de Streptomyces sp B1 (resultados nao publicados), é possível encontrar o cluster de genes idêntico ao descrito estar envolvido na biossíntese desse metabólito: Yu, D.; Xu, F.; Valiente, J.; Wang, S.; Zhan, J.; J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2013, 40, 159 (GenBank: JX499187.1); Chen, Y.; Li, P.; Li, J.; Guo, Z.; Streptomyces lavendulae stereospecific keto reductase gene, partial cds; and SARP-family Regulator, bpsA, ribose-phosphate pyrophosphlkinase, NADH flavin oxidoreductase, Indigoidine synthase A, and tautomerase genes, complete cds, Acesso GenBank: KJ192365.1. DOI: http://dx.doi.org/10.1007/s10295-012-1207-9 PMID: 23053349

33. Burkhart, B. M.; Gassman, R. M.; Langs, D. A.; Pangborn, W. A.; Duax, W. L.; Pletnev, V.; Peptide Sci. 1999, 51, 129. DOI: http://dx.doi.org/10.1002/(SICI)1097-0282(1999)51:2<129::AID-BIP3>3.0.CO;2-Y

34. Rottig, M.; Medema, M. H.; Blin, K.; Weber, T.; Rausch, C.; Kohlbacher, O.; Nucl. Acids Res. 2011, 39, W326.

35. O estudo levou ao direcionamento das linhagens identificadas como B1 e A23 como bastante promissoras. Essas linhagens foram recentemente sequenciadas utilizando tecnologia Illumina MiSeq e estao sendo investigadas por estudos via genome mining. A projeto genoma total (whole-genome shotgun project) de Streptomyces wadayamensis A23 está depositado no DDBJ/EMBL/GenBank sob o número de acesso JHDU00000000; de Oliveira, L. G; Tormet Gonzalez, G. D.; Samborsky, M.; Marcon, J.; Araujo, W. L.; Azevedo, J. L.; Genome Announcements 2014, 2, e00625. PMID: 24994795